نوع مقاله : مروری

نویسنده

موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران

چکیده

کشت‌های سلولی، خصوصاً کشت‌های پرایمری، کاربرد وسیعی در جداسازی و شناسایی ویروس‌ها دارند. ویروس‌ها از مهم‌ترین عوامل بروز بیماری‌ها و ایجاد خسارات اقتصادی هنگفت هستند. همچنین جهت تحقیقات پایه در فیزیولوژی سلولی، ژنتیک و بسیاری از موارد دیگر مورد استفاده قرار می‌گیرند. کشت‌های سلولی پرایمری، همچنین در تحقیقات کروموزومی در مورد کاریوتایپ، مورفولوژی و حالات غیرطبیعی کروموزوم‌ها مورد استفاده قرار می‌گیرند. تهیه کشت سلولی پرایمری، در موجودی نظیر زنبور عسل که تاکنون تیره سلولی از آن تهیه نشده، کاربرد وسیعی در جداسازی و شناسایی ویروس‌ها دارد. کشت‌های سلولی پرایمری همچنین مقدمه‌ای برای تولید تیره‌های سلولی می‌باشند. در زمینه کشت سلولی زنبور عسل تحقیقات در اغلب کشورها محدودتر از سایر حشرات بوده ولی در سال‌های اخیر نتایج خوبی در این زمینه بدست آمده است. در ایران نیز نتایج مطلوبی از تهیه کشت پرایمری از مرحله لاروی و شفیرگی زنبور عسل بدست آمده که در این خصوص حائز اهمیت می‌باشد. از آنجائیکه گزارشاتی از بیماری‌های ویروسی مهم زنبور عسل در ایران وجود دارد، این مقاله به معرفی روش‌های تهیه کشت سلولی زنبور عسل و نتایج بدست آمده در ایران و سایر کشور‌ها پرداخته است که می‌توان در مواقع لزوم نسبت به جداسازی ویروس‌های مورد نظر و مطالعات مرتبط بر روی آنها اقدام نمود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

عنوان مقاله [English]

Review on application and preparation of cell cultures of honey bee (Apis mellifera)

نویسنده [English]

  • Roozbeh Fallahi

Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research Education and Extension Organization (AREEO), Karaj, Iran

چکیده [English]

The cell cultures, especially primary cultures, are widely used in the isolation and identification of viruses. Viruses are one of the most important causes of disease and can cause enormous economic damage. Also, they are used in basic research in cell physiology, genetics, and many other items. Primary cell cultures are also used in chromosomal research on karyotypes, morphology, and abnormal states of chromosomes. Primary cell culture preparation, such as bees that have not yet been derived from the cell line, is widely used in the isolation and identification of viruses. In the field of honey bee cell culture, the research in most countries is more limited than other insects but in recent years, good results have been achieved in this field. There are some good results about the larval and pupal stages of the honey bee primary culture in Iran. Since there are some reports about the influence of honey bee in viral investigation in Iran, this article introduces methods of bee cell culture preparation and the results obtained in Iran and other countries that can use to isolate viruses and study them when necessary.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Cell culture
  • Honey bee
  • Application of cell culture
  • Preparation of cell culture
Fallahi, R. 2013. Use of grasshoppers in biology research - providing methods for maintenance and care. Sonboleh, 231: 60-62.
Fallahi, R. 2018. Preparation of fish primary cell culture. Veterinary Researches & Biological Products, 31(1): 162-170.
Fallahi, R. and Ghalenoee, M. 2016. Preparation of honey bee (apis mellifera l.) primary cell culture by enzymatic disaggregation and planting minced tissues methods.
Fallahi, R. and Kargar-Moakhar, R. 2006. Primary cell culture from gold fish (carassius auratus) different organs by enzymatic disaggregation method. In: The 3rd Iranian Congress on Virology. Tehran, Iran.
Fallahi, R. and Mansouri, M.A. 2015. Biology, breeding, diseases and principles of working to laboratory animals. Razi Vaccine and Serum Research Institute Publication.
Fallahi, R. and Sadri, R. 2010. Preparation of primary cell culture from honey bee (apis mellifera) by enzymatic disaggregation and planting method. In: Globalization of tropical animal diseases and public health concerns. Proceedings of the 13th Association of Institutions for Tropical Veterinary Medicine (AITVM) Conference, Bangkok, Thailand, 23-26 August 2010. Association of Institutions for Tropical Veterinary Medicine (AITVM): pp: 212-213.
Fallahi, R., Sadri, R. and Yaghini, M. 2010. Preparation of primary cell culture from honey bee (apis mellifera) by enzymatic disaggregation and planting method.
Gascuel, J., Masson, C. and Beadle, D. 1991. The morphology and ultrastructure of antennal lobe cells from pupal honeybees (apis mellifera) growing in culture. Tissue and Cell, 23(4): 547-559.
Genersch, E., Gisder, S., Hedtke, K., Hunter, W.B., Möckel, N. and Müller, U. 2013. Standard methods for cell cultures in apis mellifera research. Journal of Apicultural Research, 52(1): 1-8.
Ju, H. and Ghil, S. 2015. Primary cell culture method for the honeybee apis mellifera. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Animal, 51(9): 890-893.
Kolokol'tsova, T. and Tsareva, A. 1995. Morphological and karyologic analysis of primary and continuous lepidopteran cells. Voprosy virusologii, 40(2): 91-95.
Kreißl, S. and Bicker, G. 1992. Dissociated neurons of the pupal honeybee brain in cell culture. Journal of neurocytology, 21(8): 545-556.
Lynn, D.E. 2002. Methods for maintaining insect cell cultures. Journal of Insect Science, 2(9): 1-6.
Moharrami, M. and Modirrousta, H. 2013. Molecular detection of acute bee paralysis virus in iran.
Murata, Y., Ozaki, M. and Nakamura, T. 2006. Primary culture of gustatory receptor neurons from the blowfly, phormia regina. Chemical senses, 31(6): 497-504.
Sorescu, I., Tansa, R., Gheorghe, L., Mardare, A. and Chioveanu, G. 2003. Attempts to in vitro cultivate honey bee (apis mellifera l.) haemocytes. Studies Research Veterinary Medicine (Bucharest), 9: 123-131.
Tolbert, L.P. and Oland, L.A. 1990. Glial cells form boundaries for developing insect olfactory glomeruli. Experimental neurology, 109(1): 19-28.
Wolf, K. and Ahne, W. 1982. Advances in cell culture. Academic Press.
Wolf, K. and Ahne, W. 1982. Fish cell culture. In: Advances in cell culture. Elsevier: pp: 305-328.
Wolf, K. and Mann, J.A. 1980. Poikilotherm vertebrate cell lines and viruses: A current listing for fishes. In vitro, 16(2): 168-179.
Wolf, K. and Quimby, M. 1978. Systematic management of animal cell lines. TCA manual/Tissue Culture Association, 4(1): 741-745.